pod酶活性测定方法
Pod酶活性测定方法有定时法、连续监测法、平衡法。定时法 通过测定酶反应开始后某一时间段内（t1到t2）产物或底物浓度的总变化量来求取酶反应初速度的方法。其中t1往往取反应开始的时间。该法最基本的一点是停止反应后才测定底物或物的变化。优点：简单易行，对试剂要求不高。缺点：难保证测定结果的真实性。
POD测定：酶液稀释10倍，取50uL待测液与2mL POD反应液和1mL 0.2mo1/L的磷酸二氢钾溶液反应，用紫外分光光度计于470nm处每隔30sec测其吸光值A470，重复3次求平均值，以△A470/min/gFW表示酶活大小。SOD（超氧化物歧化酶活性）的测定 试剂：① 0.05mol/l磷酸缓冲液（PH值为8）。
.5 g叶片加入50 mmol L-1磷酸缓冲液（pH8，含2％的聚乙烯吡咯烷酮），研磨，4℃ 8000 r/min离心20 min，上清液定容至5 ml。
过氧化物酶（Peroxidase，POD）活性测定POD活性测定采用愈创木酚法（Lurie等，1997）。1用酶标仪进行测定时按比例调整为总反应体积为400μL。
酶活性测定的反应体系：依次加入9mL0.05mol·L-1磷酸缓冲液；0mL2％H2O2；0mL 0.05mol·L-1愈创木酚和 0.1mL 酶液。
额外方法：使用便携式溶解氧仪定量加入H2O2后产生的O2，以进一步评估CAT样活性。注意事项：荧光分析应在避光条件下进行，以避免光干扰。确保反应体系中的H2O2浓度适中，以充分反映待测样品的CAT样活性。
植物pod活性几万是正常的吗
是正常的。植物POD活性的正常范围是440.327~52463U/g。这个范围是通过对大量植物样品的测量得出的平均值和标准差。POD活性的单位是U/g，表示每克植物组织中的过氧化物酶活性。POD活性的测量通过酶学方法进行，常用的是测定POD催化反应产生的染色产物的吸光度变化。这种测量方法可以反映出植物体内POD的活性水平。
.2到1。经查百科显示，室温下，正常POD酶活性值为0.2到1。POD活性值低于正常值的可能是出现了病害。pod酶是广泛存在于各种动物、植物和微生物体内的一类氧化酶，以H2O2为电子受体直接氧化酚类或胺类化合物。
pod植物测的OD值一般是在0.6-0之间，这是正常的。因为pod植物测OD值的原理是通过测量植物素的吸收能力来评估细菌的生长繁殖情况，所以在不同的菌株和培养条件下，OD值会有所不同。但一般来说，OD值在这个范围内就可以说明菌株在培养基上生长良好，且没有受到明显的抑制。
过氧化物酶（POD）广泛存在于各种动植物体内，其活性因物种和生长条件的不同而变化。例如，小白菜叶的过氧化氢酶活性为**1968U/gFW/min**，红菜苔叶的过氧化氢酶活性为**2106U/gFW/min**，芫茜叶为**843U/gFW/min**。
不同种类或品种的植物对相同逆境条件的响应存在差异，耐逆性强的品种能在较长时间内保持较高的POD活性水平，从而更好地抵御逆境影响。综上所述，逆境下植物体内POD活性的变化规律复杂多样，受多种因素共同作用。研究这些变化对于深入理解植物逆境适应机制及培育抗逆性更强的新品种具有重要意义。
pod活性高说明植物组织老化像老茎和嫩叶。据相关调查资料显示过氧化物酶广泛存在于植物体中，是活性较高的一种酶。与呼吸作用、光合作用及生长素的氧化都有关系。在植物生长发育过程中活性发生变化。老化组织中活性较高，幼嫩组织中活性较弱。
为什么过氧化物酶可作为果蔬热汤是否充分的指标?
过氧化物酶属于最耐热的酶类，在果蔬加工中常被当作热处理是否充分的指标。POD的测定方法：方法：将已热处理的原料中抽取样品，横切，随即放入愈创木酚或联苯胺溶液中，然后取出，在切面上滴0.3%H2O2，数分钟后，用愈创木酚处理的样品变为褐色，联苯胺变为深蓝色，说明过氧化物酶未被破坏，热处理时间不够，如果均不变色，则表示热处理效果良好。
藕的维生素C含量较高，还含有多酚类化合物、过氧化物酶，还含有比较丰富的优质蛋白质，其氨基酸构成与人体需要接近，生物学价值高。此外，藕还富含膳食纤维、钙、磷含量也较高。藕的碳水化合物和脂肪含量较少，含有较多的维生素和微量元素，尤其维生素C，并且钾元素和铁元素含量也较高。
制烫可以破坏果蔬的氧化酶系统，可以防止酶的氧化而产生的进一步氧化。热烫也可以使细胞内原生质凝固，失水而同细胞壁分离，增加了细胞壁的渗透性，有利于组织的水分蒸发，加快烘干速度。热烫一般采用热水或蒸汽进行，时间一般比较短。控制在2—8分钟左右。
营养成分莲藕既可当水果，又可作佳肴，生啖熟食两相宜。莲藕的维生素C含量丰富（每100克中含40-50毫克），还有多酚类化合物、过氧化物酶，能把人体内的“垃圾”打扫得一干二净。莲藕中含有比较丰富的优质蛋白质（约2%），其氨基酸构成与人体的需求接近，生物学价值高。
您好,能否提供SOD,CAT,POD,MDA的测定方法和具体操作时的注意事项啊...
使用便携式溶解氧仪定量加入H2O2后产生的O2，以进一步评估CAT样活性。注意事项：荧光分析应在避光条件下进行，以避免光干扰。确保反应体系中的H2O2浓度适中，以充分反映待测样品的CAT样活性。
在冰浴下研磨成匀浆，加入提取介质冲洗研钵，并使终体积为5 mL，4℃下1000rpm离心15 min，上清液即为SOD粗提液。
按照一定顺序加入各种溶液（注意最后加入核黄素溶液）。其中3支为测定管，2支为对照管。混匀后将1支对照管置于暗处，其它各管置于4000 LUX日光灯下反应15 min后，立即取出，置于暗处终止反应。以不照光管做空白参比，于560 nm处分别测定其它各管的吸光度值。
直接法 原理是根据O2 或产生O2 的物质本身的性质测定O2 的歧化量，从而确定SOD的活性。经典的直接法包括：脉冲辐射分解法、电子顺磁共振波法（EPR）、核磁共振法。由于所需的仪器设备价格昂贵，一般较少应用。
测定方法很多，常见的有化学法、免疫法和等电点聚焦法。其中化学法应用最普遍，化学法的原理主要是利用有些化合物在自氧化过程中会产生有色中间物和O2 -，利用SOD分解而间接推算酶活力。
植物组织pod活性的测定注意事项
1、待测样品中不能含有酶抑制剂，同时需避免反复冻融。 POD酶液提取时，注意低温操作，防止酶活性。 以煮沸的酶液为对照时，酶要充分失活。 POD氧化剂具有一定腐蚀性，请小心操作。 POD氧化剂易挥发，请密闭保存，否则检测效率下降。 如果没有分光光度计，也可以使用普通的酶标仪测定，每次检测指标不宜过多，否则操作时间不一，有可能导致样本间的差异。
2、植物POD活性的正常范围是440.327~52463U/g。这个范围是通过对大量植物样品的测量得出的平均值和标准差。POD活性的单位是U/g，表示每克植物组织中的过氧化物酶活性。POD活性的测量通过酶学方法进行，常用的是测定POD催化反应产生的染色产物的吸光度变化。这种测量方法可以反映出植物体内POD的活性水平。
3、测定方法包括提取样品中的MDA，将提取液与硫代巴比妥酸溶液混合后加热，并在特定波长下测定吸光度。最后，通过计算得出MDA的含量。在实验过程中，需要注意三氯乙酸的浓度、加热时间以及可能的糖类物质干扰。如果存在干扰，可以通过其他波长下的吸光度来校正并准确计算MDA含量。
4、过氧化物酶（Peroxidase，POD）活性测定POD活性测定采用愈创木酚法（Lurie等，1997）。用酶标仪进行测定时按比例调整为总反应体积为400μL。反应体系为30μL粗酶液，290 L 0.3%愈创木酚（用50 mmol/L的PBS配制，pH 4）和 80L0.3%H2O2（用50 mmol/L的PBS配制，pH 4）。
5、过氧化物酶（POD）在植物体内含量较多的一些组织包括： 叶子：叶子是植物的主要光合器官，也是产生氧气的重要组织。因此，叶子中的过氧化物酶含量相对较高。 根系：根系是植物吸收养分和水分的主要器官，也需要氧化反应来产生能量。因此，根系中的过氧化物酶含量也较高。
6、植物生理学POD是：过氧化物酶体的标志酶，是其一类氧化还原酶，它们能催化很多反应。了解过氧化氢酶活性测定的几种方法，掌握用愈创木酚法分别测定过氧化氢酶和过氧化物酶的活性。过氧化物酶广泛颁布于植物的各个组织器官中。
